Metodi biochimici e biologico molecolari applicati alle biotecnologie

A.A. 2020/2021
12
Crediti massimi
112
Ore totali
SSD
BIO/10 BIO/11
Lingua
Italiano
Obiettivi formativi
Il corso si propone l'acquisizione da parte degli studenti di conoscenze circa i principali metodi e tecnologie associate alla biologia molecolare e biochimica nel contesto della ricerca biotecnologica e in applicazioni diagnostiche e terapeutiche. Il corso comprende anche una parte di esercitazioni pratiche su tematiche inerenti.
Risultati apprendimento attesi
Alla fine del corso lo studente avrà acquisito tutte le conoscenze teoriche e pratiche su metodi di biologia molecolare e biochimica per cominciare a lavorare in modo efficace in un laboratorio in cui si usano tecniche attinenti.
Programma e organizzazione didattica

Edizione unica

Responsabile
Periodo
annuale
Queste informazioni si riferiscono al modulo su metodi biologico molecolari del primo semestre tenuto dal Prof. Lazzaro. Sul modulo di metodi biochimici del secondo semestre verranno fornite informazioni a tempo debito.

Le lezioni frontali saranno sostituite da lezioni in remoto sincrone in streaming sulla piattaforma Microsoft Teams. Le lezioni verranno registrate e rese disponibili sul sito Ariel.

L'esame rimarrà scritto in presenza se le condizioni lo consentiranno. In caso contrario si svolgeranno sempre in modalità scritta, in remoto, tramite la piattaforma Exam.net

I laboratori si svolgeranno in presenza. Le ore di laboratorio subiranno delle riduzioni in modo proporzionale alla riduzione della capienza dei laboratori (in seguito alle norme anti-contagio). Le restanti ore verranno sostituite da lezioni in remoto sincrone.
Prerequisiti
Sono richieste buone conoscenze di biochimica e biologia molecolare. Propedeuticità consigliate: Chimica biologica e Biologia Molecolare
Modalità di verifica dell’apprendimento e criteri di valutazione
Modalità di esame: Scritto (domande aperte)
Metodi biochimici
Programma
- Tecniche di base di analisi e purificazione di proteine (Omogenizzazione, centrifugazione, cromatografie, elettroforesi)
- Metodi spettroscopici (spettroscopia di assorbimento, fluorescenza e dicroismo circolare), valutazione dell'attività biologica (dosaggi di attività biologica, dosaggi di attività enzimatica).
- Tecniche di Biologia Strutturale
- Tecniche di analisi dell'interazione proteina-proteina o proteina-ligando.
- Anticorpi: struttura e funzione. Anticorpi policlonali e monoclonali. ELISA, Western Blot e Phage display. Uso di anticorpi in diagnosi e terapia, anticorpi umanizzati. Vaccini ricombinanti.
- Tecniche di ingegnerizzazione di proteine: Mutagenesi sito diretta, Mutagenesi casuale (directed evolution, molecular breeding: error prone PCR, DNA shuffling, ITCHY). Metodi di screening di varianti proteiche ottenute mediante mutagenesi.
- Enzimi: Dosaggi enzimatici, uso di enzimi per il dosaggio di metaboliti.
- Classi di proteine di interesse industriale e in terapia: Proteine del sangue (fattori di coagulazione, lisi del coagulo), Proteasi, lipasi, amilasi, Enzimi termostabili, Enzimi immobilizzati, biosensori.
- Il corso prevede la discussione a lezione di numerosi esempi di ricerca pubblicata su riviste scientifiche.
-Il corso prevede 16 ore di esercitazioni di laboratorio a posto singolo sulle tematiche affrontate durante il corso
Metodi didattici
Lezioni frontali ed esercitazioni di laboratorio a posto singolo
Materiale di riferimento
K.Wilson & J.M.Walker
Principles and techniques of Biochemistry and Molecular Biology
Cambridge University Press
M. Stoppini & V. Bellotti
Biochimica Applicata
EdiSES
Metodi biologico molecolari
Programma
- Tecniche di base (DNA/RNA elettroforesi e varianti, Southern/Northern blot, PCR, clonaggi )
- Costruzione di librerie genomiche e cDNA, vettori di clonaggio, applicazione
- Screening genetici, phage display, two hybrid e varianti
- Tecniche di sequenziamento del DNA
- Utilizzo di organismi modello
- Screening per letalità sintetica e applicazione come strategia terapeutica
- Generazione di mutanti
- Studio dell'espressione genica
- Interazioni proteine-acidi nucleici
- Il corso prevede la discussione a lezione di esempi di ricerca pubblicata su riviste scientifiche.
-Il corso prevede 16 ore di esercitazioni di laboratorio a posto singolo sulle tematiche affrontate durante il corso
Metodi didattici
Lezioni frontali ed esercitazioni di laboratorio a posto singolo
Materiale di riferimento
Richard J Reece
Analisi dei geni e dei genomi
EdiSES
T.A. Brown
Genomi 3
EdiSES
Moduli o unità didattiche
Metodi biochimici
BIO/10 - BIOCHIMICA - CFU: 0
BIO/11 - BIOLOGIA MOLECOLARE - CFU: 0
Esercitazioni di laboratorio a posto singolo: 16 ore
Lezioni: 40 ore
Docente: Ricagno Stefano
Turni:
Docente: Ricagno Stefano
Turno 1
Docente: Ricagno Stefano
Turno 2
Docente: Ricagno Stefano

Metodi biologico molecolari
BIO/10 - BIOCHIMICA - CFU: 0
BIO/11 - BIOLOGIA MOLECOLARE - CFU: 0
Esercitazioni di laboratorio a posto singolo: 16 ore
Lezioni: 40 ore

Docente/i
Ricevimento:
Mercoledì 14:30-15:30
Studio IV piano torre A
Ricevimento:
su appuntamento per email
dipartimento bioscienze via celoria 26, piano 5 torre b