Laboratorio di metodologie cellulari e molecolari

A.A. 2025/2026
10
Crediti massimi
120
Ore totali
SSD
BIO/10 BIO/13
Lingua
Italiano
Obiettivi formativi
L'insegnamento, in linea con gli obiettivi formativi del corso di laurea, si propone di fornire agli/alle studenti/studentesse una generale comprensione dell'eziologia e della patogenesi delle malattie nell'uomo nonché dei meccanismi biologici e molecolari sottesi alla loro insorgenza, e familiarizza con il linguaggio di questa materia. Inoltre, esso si prefigge di fornire allo studente gli strumenti necessari alla comprensione dei meccanismi biologici di difesa e quelli patologici del sistema immunitario, privilegiando gli aspetti molecolari e biotecnologici.
Risultati apprendimento attesi
Al termine del corso, lo studente avrà gli strumenti per comprendere, elaborare e applicare i concetti fondamentali dei principali meccanismi di patogenesi delle malattie. Lo studente sarà in grado di integrare le competenze di biologia molecolare e cellulare, acquisite precedentemente e durante il corso, nello studio della patologia generale e dell'immunologia.
L'integrazione tra patologia e immunologia consentirà allo studente di comprendere il ruolo del sistema immunitario nel supportare o compromettere la salute umana. Inoltre, lo studente svilupperà la capacità di esporre le proprie conoscenze utilizzando un linguaggio scientifico chiaro e rigoroso. Queste competenze saranno fondamentali per discutere e valutare criticamente i risultati derivanti da problematiche biologiche nella ricerca in ambito patologico.
Le sessioni di journal club, infine, introdurranno lo studente al mondo della ricerca scientifica, offrendo allo studente l'opportunità di affinare le abilità di lettura critica, presentazione e discussione di dati scientifici.
Corso singolo

Questo insegnamento non può essere seguito come corso singolo. Puoi trovare gli insegnamenti disponibili consultando il catalogo corsi singoli.

Programma e organizzazione didattica

Edizione unica

Responsabile
Periodo
Primo semestre

Prerequisiti
Gli studenti devono avere assolto a tutti gli obblighi di propedeuticità indicati nel piano di studi: Biologia generale e cellulare, Genetica.
Modalità di verifica dell’apprendimento e criteri di valutazione
L'esame consiste in una prova scritta seguita da una prova orale, entrambe obbligatorie e svolte lo stesso giorno
Per sostenere la prova orale è necessario avere superato la prova scritta.
La prova scritta, della durata di 2 ore, è costituita da 30 domande (15 per ognuno dei due moduli) che comprendono:
1) quesiti a risposta multipla (60-70 %);
2) quesiti a breve risposta libera (15-20 %);
3) esercizi di tipo applicativo, aventi contenuti e difficoltà analoghi a quelli affrontati nell'attività di laboratorio (15-20 %) (per la soluzione di tali esercizi è ammesso l'uso di una calcolatrice).
Ogni quesito/esercizio consente di ottenere 1 punto. La prova scritta è superata se il punteggio totalizzato è uguale o superiore a 18.
La prova orale, in presenza di due docenti (uno per ognuno dei due moduli), è costituita da una interrogazione (3/4 domande) che, a partire dai contenuti della prova scritta, verterà su tutti gli argomenti trattati nel corso (lezioni e esercitazioni in laboratorio).
Entrambe le prove mirano ad accertare che lo studente abbia conoscenze teoriche e pratiche sulle principali metodologie cellulari e molecolari per la separazione e l'analisi di proteine e acidi nucleici, e le competenze per potere descrivere e applicare correttamente le tecniche di base di biochimica, biologia cellulare e molecolare affrontate nell'esperienza di laboratorio
Il voto finale dell'esame, espresso in trentesimi, risulterà dalla somma del punteggio ottenuto nella prova scritta e da quello ottenuto nella prova orale che potrà determinare un miglioramento o un peggioramento del voto ottenuto nello scritto in un range compreso tra ± 4 punti. In caso di non superamento dell'esame, lo studente dovrà risostenere interamente l'esame (sia la prova scritta che quella orale) in un appello successivo.
Modulo: Metodologie cellulari
Programma
La cellula come sistema sperimentale. Colture cellulari batteriche e colture di cellule animali: principi, applicazioni, strumentazione e metodologia.
Il clonaggio del DNA all'interno di una cellula: basi del clonaggio molecolare nelle cellule, endonucleasi di restrizione, ligazione, vettori per il clonaggio, trasformazione, screening delle colonie.
Il clonaggio per l'espressione genica: fattori che influenzano l'espressione, vettori d'espressione, sistemi cellulari per l'espressione dei geni (batteri, lievito, cellule di mammifero), marcatori e segnali, mutagenesi.
Silenziamento dell'espressione di un gene (knock-down genico) in sistemi cellulari: interferenza da RNA (siRNA), microRNA, oligonucleotidi morfolino
Metodi didattici
I docenti utilizzeranno: a) Lezioni frontali (3 CFU); b): attività sperimentale individuale e/o in piccoli gruppi in laboratorio multidisciplinare (2 CFU).
I docenti utilizzeranno la piattaforma Ariel per fornire il materiale didattico che consiste in: a) copia delle presentazioni power point utilizzate nelle lezioni frontali; b) dispense con la spiegazione delle procedure sperimentali da affrontare nell'attività di laboratorio; c) link di video tutorial sulle principali tecniche e metodologie utilizzate nell'attività sperimentale di laboratorio; d) copia delle schede tecniche e delle schede di sicurezza dei reagenti utilizzati nell'attività sperimentale di laboratorio.
La frequenza alle lezioni frontali e all'attività di laboratorio multidisciplinare è obbligatoria.
Materiale di riferimento
Dai geni ai genomi -Principi e applicazioni della tecnologia del DNA ricombinante
Jeremy W. Dale, Malcom von Schantz and Nick Plant, Copyright © 2013 EdiSES
PRACTICAL SKILLS IN BIOMOLECULAR SCIENCES
R.Reed, D.Holmes, J.Weyers, A.Jones, Pearson 6th Ed 2022
Modulo: Metodologie molecolari
Programma
Tecniche generali di laboratorio
Principi generali delle tecniche di centrifugazione, cromatografiche, elettroforetiche e spettrofotometriche.
Tecniche di base per lo studio di proteine: estrazione, purificazione e metodi di dosaggio
Determinazione dell'attività enzimatica: criteri generali e principali metodi di dosaggio
Estrazione, purificazione e quantificazione di acidi nucleici.
Analisi di acidi nucleici mediante elettroforesi e blotting.
Librerie genomiche e a cDNA, metodi di screening delle librerie.
Il clonaggio molecolare senza cellule: la PCR. Reazione di PCR e sua ottimizzazione, progettazione dei primer, risoluzione dei problemi, clonaggio dei prodotti di PCR: tipi di PCR (PCR Long-Range, RT-PCR, PCR quantitativa o 'Real-Time'), applicazioni della PCR.
Analisi dell'espressione genica: Northern blot, RT-PCR, ibridazione in situ, geni reporter, studio del promotore, analisi del trascrittoma.
Metodi didattici
I docenti utilizzeranno: a) Lezioni frontali (2 CFU); b): attività sperimentale individuale e/o in piccoli gruppi in laboratori multidisciplinari (3 CFU).
I docenti utilizzeranno la piattaforma Ariel per fornire il materiale didattico che consiste in: a) copia delle presentazioni power point utilizzate nelle lezioni frontali; b) dispense con la spiegazione delle procedure sperimentali da affrontare nell'attività di laboratorio; c) link di video tutorial sulle principali tecniche e metodologie utilizzate nell'attività sperimentale di laboratorio; d) copia delle schede tecniche e delle schede di sicurezza dei reagenti utilizzati nell'attività sperimentale di laboratorio.
La frequenza alle lezioni frontali e all'attività di laboratorio multidisciplinare è obbligatoria.
Materiale di riferimento
Dai geni ai genomi -Principi e applicazioni della tecnologia del DNA ricombinante
Jeremy W. Dale, Malcom von Schantz and Nick Plant, Copyright © 2013 EdiSES
PRACTICAL SKILLS IN BIOMOLECULAR SCIENCES
R.Reed, D.Holmes, J.Weyers, A.Jones, Pearson 6th Ed 2022
Moduli o unità didattiche
Modulo: Metodologie cellulari
BIO/13 - BIOLOGIA APPLICATA - CFU: 5
Esercitazioni: 32 ore
Lezioni: 24 ore

Modulo: Metodologie molecolari
BIO/10 - BIOCHIMICA - CFU: 5
Esercitazioni: 48 ore
Lezioni: 16 ore

Docente/i
Ricevimento:
Telefonare per concordare un appuntamento
LITA
Ricevimento:
su appuntamento da concordare via mail
Ricevimento:
previo appuntamento
LITA, Via Fratelli Cervi 93, Segrate, MI
Ricevimento:
Previo appuntamento da concordare via e-mail
LITA, Via F.lli Cervi 93 - 20054 Segrate (MI)